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Gabriel

Master Thesis Researcher & Intern

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Lima, Lima Province, Peru
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Formação acadêmica

MSc. Erasmus Mundus Degree in Human Diseases Models Morphological Phenotyping (MorphoPHEN), Biología, Veterinaria
UAB (España) / UNINA (Italia) / AUTH (Grecia) / UHELSINKI (Finlandia)
2025 - 2026
BSc. Ciencias Biológicas, Biología
Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM)

Idiomas

EspañolLengua materna
InglésC1

Resumo

Master Thesis Researcher & Intern buscando nuevas oportunidades

Experiência

Master Thesis Researcher & Intern

Kuure's Lab, Helsinki Institute of Life Science (HiLIFE), University of Helsinki
Ene 2026 - Presente

Realicé genotipificación mediante PCR de embriones individuales en estadios de mórula y blastocisto para proyectos de iGONAD y Enveloped Delivery Vehicle (EDV); evalué la eficiencia de edición mediante análisis de secuenciación Sanger utilizando editR.. Participé en la obtención de imágenes mediante ultrasonido de alta resolución para la detección temprana de gestación y el monitoreo reproductivo en Acomys dimidiatus.. Establecí, mantuve y criopreservé cultivos primarios de fibroblastos embrionarios de ratón (MEF) de Acomys dimidiatus y Mus musculus para modelos celulares comparativos.. Realicé el seguimiento longitudinal de tumores, mediciones volumétricas y caracterización fenotípica en modelos murinos inmunodeficientes.. Realicé tinciones de inmunofluorescencia (IF) en muestras whole-mount y cortes histológicos, microscopía de fluorescencia/confocal y análisis cuantitativo de imágenes para la caracterización estructural de tejidos.. Realicé microdisecciones de riñón embrionario, ensayos de cultivo organotípico y fenotipado comparativo del desarrollo en Mus musculus y Acomys dimidiatus.

Investigador de Pregrado

Laboratorio de Reproducción y Biología del Desarrollo, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM)
Ene 2025

Experiencia en extracción de ADN/ARN, PCR convencional y electroforesis en gel de agarosa. Realicé ensayos especializados de micronúcleos en diferentes tejidos (médula ósea, hígado y mucosa oral).. Realicé espermatogramas avanzados según los criterios de la OMS 2021 y análisis de dispersión de la cromatina espermática (SCD). Ejecuté protocolos de hiperestimulación, recuperación y cultivo de ovocitos y embriones, así como fecundación in vitro (FIV) en modelos murinos.. Realicé microcirugías (ovariectomía/orquiectomía) y procesamiento histológico completo, incluyendo fijación, inclusión en parafina y técnicas de tinción múltiple en tejidos de vertebrados.. Apliqué técnicas especializadas de diafanización y análisis de teratogénesis para el estudio de la ontogenia de vertebrados.

Coordinador del Bioterio

Laboratorio de Reproducción y Biología del Desarrollo, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM)

Asesor técnico en diseños de investigación basados en los principios de las 3R e implementación de estrategias de enriquecimiento ambiental para optimizar el bienestar de las colonias.. Monitoreo especializado de ciclos estrales mediante Papanicolaou, protocolos de superovulación/hiperestimulación y análisis del desarrollo embrionario y gestacional en ratones Balb/c.. Experiencia en técnicas in vivo, incluyendo administración por vía orogástrica, inyecciones intraperitoneales (IP) y subcutáneas (SC), y toma de muestras sanguíneas de la vena caudal.. Manejo del mantenimiento de colonias, protocolos de bioseguridad y acondicionamiento ambiental para garantizar resultados experimentales estandarizados y reproducibles.

Asistente de Docencia de Laboratorio

Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM)

Cursos: Biología Animal (B01327), Histología y Embriología Animal (B01295), Reproducción Animal (B01372), Fisiología Animal (B01243) y Biotecnología Animal (B02045).. Orienté a estudiantes de pregrado durante sesiones prácticas centradas en el reconocimiento anatómico, identificación microscópica y técnicas de disección de vertebrados.. Impartí instrucción sobre identificación de células y tejidos, etapas tempranas de segmentación y desarrollo ontogénico en diversos organismos modelo.. Brindé capacitación práctica en manipulación de gametos y embriones, análisis seminal según los criterios de la OMS 2020 y protocolos de criopreservación.

Pasante de Investigación

Laboratorio de Reproducción Animal, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM)
Ago 2023 - Presente

Preparación de diluyentes, fijadores y materiales para el procesamiento integral de espermatogramas.. Ejecución de protocolos de criopreservación de semen, incluyendo evaluaciones detalladas de la calidad espermática pre y postdescongelación.. Aplicación de marcadores moleculares para el análisis celular, con especialización en evaluación de actividad apoptótica y función mitocondrial.

Publicado na CazVid - 4 de nov. de 2026
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